Pemeriksaan tinja untuk diagnosis parasitologi dilakukan untuk mendeteksi:
Cacing dewasa
Segmen dari cacing pita
Ova dan kista
Larva
Trofozoit
Selular eksudat seperti leukosit, sel darah merah, makrofag dan Charcot-Leyden (CL) Kristal
Koleksi sample feses
Minta pasien untuk mengeluarkan sampel tinja langsung ke karton atau cangkir plastik bertutup.
Sekitar 20-40 gram atau 5-6 sendok tinja sudah cukup untuk pemeriksaan rutin.
Menelan obat (Tetrasiklin, sulfonamid,antiprotozoal agen, pencahar, antasida, minyak jarak, hidroksida magnesium, barium sulfat, senyawa kaolin bismut dan garam hipertonik dll) sebelum koleksi feses dapat mengganggu deteksi parasit.
Semua spesimen harus diberi label dengan nama pasien, usia, jenis kelamin, dan tanggal pengumpulan.
Spesimen harus mencapai laboratorium dalam waktu 30 menit karena trofozoit amuba mati dan menjadi sulit dikenali setelah itu.
Catatan
Jangan menyimpan spesimen pada suhu hangat. Cobalah untuk menyimpannya dalam sejuk, tempat-tempat teduh.
cegah pengeringan spesimen.
cegah kontaminasi dengan urin atau partikel kotoran.
Tinja tidak boleh dikumpulkan dari tempat yang mengandung desinfektan.
Transportasi sampel
Jika mencari trofozoit, spesimen tinja harus dikrim segera ke laboratorium untuk menghindari disintegrasi trofozoit. sampel feses harus diperiksa dalam waktu 30 menit dari koleksi. spesimen feses tidak boleh dibekukan dan dicairkan atau ditempatkan dalam inkubator karena bentuk parasit memburuk dengan sangat cepat.
Untuk fiksasi permanen dari spesimen tinja, digunakan pengawet 10% formol-garam (dibuat dengan menambahkan formalin 100 ml hingga 900 ml natrium klorida 0,85%) . Polivinil alkohol (PVA) adalah juga pengawet yang banyak digunakan
Pemeriksaan makroskopik
Berbagai poin yang perlu dicatat adalah:
Konsistensi: Konsistensi tinja bisa padat, lembut, encer atau berair. Kista ditemukan dalam tinja padat sementara trofozoit umumnya di tinja berair.
Adanya darah dan lendir.
Adanya cacing bulat, cacing benang atau proglottids cacing pita .
Warna dan bau tinja.
Pemeriksaan mikroskopis (preparat basah)
Ini adalah teknik sederhana dan mudah. Dapat dibuat langsung dari material tinja atau dari spesimen terkonsentrasi. Jenis prweparat basah meliputi:
a) Preparat Saline : digunakan untuk mendeteksi telur cacing atau larva, protozoa trofozoit dan kista. Selain itu dapat mengungkapkan adanya sel darah merah dan leukosit.
b) Preparat Yodium : Hal ini digunakan untuk noda glikogen dan inti dari kista.
Prosedur
Tempat setetes salin pada kiri slide dan satu tetes yodium di kanan slide.
Dengan aplikator ambil sebagian kecil dari spesimen (seukuran pentol korek api) dan campur dengan salin.
Demikian pula jumlah yang sama diambil dan campur dengan setetes yodium.
Tutup dengan cover slip dan amati di bawah mikroskop.
Ova, kista, trofozoit dan cacing dewasa dapat diidentifikasi sesuai ciri karakteristik mereka (Gambar 1 dan Tabel 1).
Gambar 1: fitur morfologi parasit umum ( telur / ovum / kista)
teknik Konsentrasi
Jika jumlah parasit dalam spesimen tinja adalah rendah, pemeriksaan preparat basah direct tidak dapat mendeteksi mereka, maka tinja harus dikonsentrasi. Telur, kista dan larva utuh setelah prosedur konsentrasi sedangkan trofozoit bisa hancur selama proses. Hal ini kenapa pemeriksaan preparat basah direct wajib dikerjakan sebagai tahap awal pemeriksaan mikroskopis.
Prosedur konsentrasi dikelompokkan dalam 2 kategori:
a) Sedimentasi : Di mana telur dan kista menetap di bagian bawah.
b) Flotasi: Di mana telur dan kista mengambang di permukaan akibat gradien gravitasi tertentu.
Kelemahan ,mendasar teknik sedimentasi adalah bahwa pemeriksaan sedimen sering sulit karena banyaknya puing-puing feses yang mungkin menutupi keberadaan parasit. Kelemahan ,mendasar teknik flotasi adalah bahwa tidak semua telur dan kista mengapung .
Dua macam larutan yang digunakan pada teknik konsentrasi umumnya adalah formalin-eter dan larutan jenuh garam.
teknik Sedimentasi eter -formal
Prosedur
Transfer setengah sendok teh feses dalam 10 ml air dalam wadah kaca dan aduk rata.
Saring dengan kain kasa, masukkan filtrate ke dalam tabung centrifuge 15 ml.
Centrifuge selama 2 menit pada sekitar 500 g.
Buang supernatan dan resuspend sedimen dalam 10 ml garam fisiologis. Centrifuge pada 500 g dan buang supernatan.
Resuspend sedimen dalam 7 ml formalin 10% (1 bagian formalin 40% dalam 3 bagian saline).
Tambahkan 3 ml eter (atau etil asetat).
Tutup tabung dengan stopper dan kocok dengan keras supaya campur. Lepaskan stopper dan centrifuge di 500g selama 2 menit.
Berdirikan tabung. Tampak empat lapisan, lapisan atas terdiri dari eter, kedua adalah plug puing,ketiga adalah lapisan formalin dan keempat adalah sedimen (Gambar 2).
Buang puing debris dengan memiringkan tabung dan dengan menggunakan tongkat kaca, dan tuangkan cairan hingga menyisakan sejumlah kecil formalin untuk suspensi sedimen.
Dengan pipet, ambil sedimen dan campur dengan setetes yodium. Periksa di bawah mikroskop.
Gambar 2: teknik sedimentasi Formal eter
Keuntungan
bau Tinja hilang
Sensitivitas deteksi kista atau ova meningkat 8-10 kali lipat.
Pemeriksaan lebih mudah daripada pemeriksaan preparat basah direct.
Ukuran dan bentuk struktur parasit dipertahankan.
murah, mudah dilakukan dan dapat dilakukan pada setiap tingkat sarana kesehatan.
Kekurangan
puing-puing Tinja mungkin menutupi struktur parasit.
bentuk Trophozoite tidak terdeteksi dalam metode ini.
teknik flotasi Jenuh garam
Tempatkan sekitar satu mililiter dari feses dalam wadah yang datar dan memiliki diameter kurang dari 1 ½ inci dan kapasitas sekitar 15-20 ml (Gambar 3).
Tambahkan beberapa tetes larutan garam jenuh (berat jenis 1.200) dan aduk hingga membentuk emulsi
Tambahkan larutan garam sehingga kontainer hampir penuh, aduk merata.
Buang semua partikel kasar yang mengapung ke atas.
Tempatkan wadah pada permukaan yang datar. Tambahkan larutan garam dengan mwemakai pipet sampai terbentuk meniskus cembung.
Sebuah slide kaca 3 "x 2" letakkan di atas wadah secara hati-hati sehingga bagian tengah slide kontak dengan fluida.
Biarkan selama 20 menit, setelah itu angkat slide dengan gerakan cepat, untuk menghindari tumpahan cairan dan periksa di bawah mikroskop setelah ditutup dengan coverslip.
Gambar 3: Teknik Flotasi
Kekurangan teknik flotasi
Tidak semua telur trematodal dan larva Strongyloides mengambang dalam larutan garam.
Karena berat jenis tinggi dari larutan, kista protozoa dan telur nematoda berdinding tipis akan rusak dan menjadi terdistorsi dalam penampilan jika dibiarkan selama lebih dari 20 menit.
Biosafety
Ikuti prinsip-prinsip umum laboratorium untuk Keamanan seperti mencuci tangan, memakai sarung tangan, desinfesi tempat kerja
Menangani bahan kimia dengan hati-hati. tindakan pencegahan khusus harus dilakukan untuk menyimpan bahan kimia eksplosif (asam picric dan kristal fenol) dan pelarut mudah terbakar seperti aseton, eter, benzena, xylene dll
Peralatan dan gelas harus ditangani dengan hati-hati untuk meminimalkan risiko cedera dan produksi aerosol.
Buang bahan infeksius pada tempat khusus.
Pembuangan bahan wajar
Setelah dilakukan pemeriksaan. spesimen tinja harus dibakar atau direndam dalam larutan desinfektan dan kemudian dikubur
slide kaca bekas harus dibuang dalam panci yang berisi larutan hipoklorit 1% dan dibersihkan jika untuk digunakan kembali atau dikubur jika tidak digunakan lagi.
Jaminan Kualitas
Perhatian harus diberikan kepada semua analitik, analisis pra dan pasca-analitis
Laboratorium harus berpartisipasi dalam penilaian kualitas eksternal.
Pelaporan hasil
Laporan tersebut harus mencakup komentar positif / negatif sebagai berikut:
Cacing Dewasa / segmen cacing / larva.
Selular Eksudat seperti sel darah merah, leukosit, makrofag dan kristal CL.
Trofozoit (hanya pada sample yang segar)
Ova dan kista.
Saran untuk pemeriksaan lebih lanjut.
Rujukan
Sebagai bagian dari program jaminan kualitas.
Dalam hal temuan yang tidak biasa atau keadaan wabah.
Tabel 1: fitur Penting : kista trofozoit, dan telur parasit
Kista / telur /trofozoit | Fitur | |
Entamoeba histolytica trofozoit | 12-60 μ, asimetris, motil, inti bulat tunggal, pusat karyosome tunggal , halus dan kromatin merata . | |
Entamoeba histolytica Kista | Bulat, 10-20 μ kista matang memiliki empat inti terletak di pusat karyosome; kromatin halus. Beberapa kista mungkin memiliki chromatoid bar. | |
Giardia lamblia trofozoit | 9-21x5-15 μ, berbentuk pir dengan ujung lancip, motil aktif seperti daun jatuh, 2 inti di tengah , sitoplasma granular . | |
Giardia lamblia kista | Oval, 8-12 μ panjang dan lebar 7-10 μ, inti memiliki 4 karyosome, cenderung eccenterically; ruang yang jelas antara dinding sel dan sitoplasma. Memiliki Empat badan median. | |
Entamoeba coli Kista | 10-35 μ, biasanya berbentuk bola, kista matang mungkin berisi 8 atau 16 inti. kromatin perifer adalah kasar dan granular; heterogen; karyosome biasanya eksentrik. kromatid bar jarang terlihat. | |
telur cacing gelang Subur | 60x45 μ, bulat atau bulat telur dengan cangkang tebal; ditutupi oleh mantel albuminous tebal, warna cokelat. | |
telur cacing gelang Terkupas | mantel Albuminous hilang. Semua fitur lainnya sama seperti di telur subur. | |
telur cacing gelang | 90x40 μ, memanjang, cangkang sering tipis, | |
Telur cacing tambang | Oval, ellipsoid, μ 60x40. Shell adalah berdinding tipis, halus dan tidak berwarna. | |
Threadworm telur | Planoconvex, memanjang, telur asimetris, 55x26 μ, shell tipis dan halus. Penuh larva pada telur. | |
Telur cacing cambuk | Memanjang, berbentuk barel dengan plug hialin pada kutub, 22-54 u, Shell kuning sampai kecoklatan | |
Telur cacing pita | Bulat, 31-43μ shell tebal dengan striations radial menonjol. Embrio memiliki 3 pasang kait dalam shell adalah diagnostik dari genus oncosphere. identifikasi spesies berdasarkan morfologi adalah tidak mungkin. |
Bacaan lebih lanjut
1. Ichhpujani RL, Bhatia Rajesh: Medical Parasitology. 2nd Ed Jaypee Bros, New Delhi 1998.
2. Elmer W Koneman et al: Colour Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology, 5th Ed, Lippencort , New York , 1071-1162, 1997.
3. Beaver PC, Jung RC, Cupp EW. Clinical Parasitology. 9th Ed, Philadelphia , Lea and Febiger, 1984.